Oxygen barrier and catalytic effect of the cathodic biofilm in single chamber microbial fuel cells

單室微生物燃料電池陰極生物膜的氧屏障及催化效果

來源：J Chem Technol Biotechnol 2018; 93: 2199–2207

 

論文摘要

本論文研究了在空氣陰極微生物燃料電池（AC-MFC）中，自然形成的陰極生物膜對系統性能的影響。傳統觀點認為陰極生物膜會消耗底物并降低庫侖效率（CE），但本研究發現，該生物膜實際上具有雙重積極作用：它既能作為物理屏障減少氧氣從陰極向陽極的擴散（防止好氧微生物競爭底物），又能通過其微生物群落的催化活性降低陰極過電位，從而提高CE和功率輸出。通過電化學分析（如循環伏安法）和微生物學方法（如16S rRNA基因測序），研究證實生物膜的存在使峰值電流強度增加46%，陰極工作電位從-280 mV升至-225 mV，CE顯著改善。微生物群落分析顯示生物膜由好氧和厭氧細菌混合組成，形成分層結構以適應氧梯度。結論指出，陰極生物膜是AC-MFC優化設計的關鍵因素，而非不利因素。

 

研究目的

本研究的主要目的包括：

 

闡明陰極生物膜的雙重角色：通過電化學和微生物學方法，系統評估陰極生物膜在AC-MFC中的作用，特別是其對氧擴散的屏障效應和對陰極反應的催化效應。

驗證生物膜對庫侖效率的影響：探究生物膜存在下CE的變化機制，解決以往研究中關于生物膜利弊的爭議。

揭示微生物群落結構：分析生物膜的微生物組成，理解其如何通過好氧/厭氧菌的協同作用實現氧管理和電催化。

 

為MFC設計提供指導：為優化MFC性能（如陰極面積設計、生物膜管理）提供實驗證據，推動其實際應用。

 

研究思路

本研究采用了“實驗觀測-電化學分析-微生物驗證”的綜合思路：

 

實驗系統構建：使用單室AC-MFC反應器（28 mL和400 mL），以乙酸鈉為底物，在fed-batch模式下運行。陰極涂覆鉑催化劑，陽極采用熱處理的石墨刷，外接1000Ω電阻。

生物膜處理對比：設置不同實驗組，比較有/無陰極生物膜的情況。生物膜通過自然生長形成，并通過物理移除評估其影響。

多參數實時監測：

 

電化學參數：持續測量電壓、電流、功率輸出，計算CE。

溶解氧（DO）分布：使用丹麥Unisense溶解氧微電極測量體相液體和生物膜內部的DO垂直剖面，分辨率達亞毫米級，以研究氧擴散屏障效應。

循環伏安法（CV）：在生物膜存在/不存在下進行CV測試，分析陰極催化活性。

 

微生物群落分析：通過16S rRNA基因高通量測序，解析生物膜的菌群組成。

 

數據關聯分析：將電化學性能（如CE、功率）與DO剖面、微生物數據關聯，使用統計方法驗證因果關系。

 

測量數據及其研究意義

研究測量了多方面的數據，其意義和來源如下（數據均引用自文檔中的圖表和正文描述）：

 

電壓、電流和庫侖效率（CE）時序數據（評估MFC整體性能）

 

測量指標：MFC運行過程中的電壓、電流動態變化，以及計算的CE值。

研究意義：這些數據是評估生物膜對MFC性能影響的最直接指標。圖1B顯示，移除生物膜后CE顯著下降，而生物膜存在時CE穩定或升高，這顛覆了傳統觀點，證明生物膜有益而非有害。CE的提高直接關聯到底物更有效地用于產電而非好氧消耗。

 

數據來源：圖1B（caption: "Consecutive batch cycles of two AC-MFCs... indicating washout of the biofilm"）。

 

電極電位動態響應（揭示電子傳遞路徑）

 

測量指標：陽極、陰極和整體MFC的電位在底物添加后的變化。

研究意義：圖2顯示，當系統曝氣（Period I）時，陽極電位升高（更正值），表明氧氣成為優先電子受體；而厭氧條件（Period II）恢復陽極產電功能。這證實氧氣擴散會干擾陽極呼吸菌（ARB）的電子傳遞，降低CE，突顯了生物膜屏障的重要性。

 

數據來源：圖2（caption: "MFC cell potential, anode and cathode potential for a batch cycle..."）。

 

陰極面積優化數據（確定最佳設計參數）

 

測量指標：不同陰極面積下的CE和最大功率輸出。

研究意義：圖3表明，存在最佳陰極面積（7.1 cm2），使CE和功率最大化。面積過大會導致氧擴散過量，降低CE。這為MFC工程設計提供了關鍵參數，強調需平衡氧供應與擴散控制。

 

數據來源：圖3（caption: "Effect of MFC cathode aperture on coulombic efficiency and maximum power output"）。

 

溶解氧（DO）在體相液體中的分布（驗證氧屏障效應）

 

測量指標：使用Unisense電極測量的MFC內不同位置的DO濃度。

研究意義：圖4和圖5顯示，有生物膜時陽極附近DO始終接近零，而無生物膜時DO升高。這直接證明生物膜有效阻隔氧向陽極擴散，維持厭氧環境，保障ARB活性。

 

 

數據來源：圖4（caption: "Effect of biofilm presence on voltage and DO near the anode"），圖5（caption: "DO at different depths in the bulk liquid for a batch cycle..."）。

 

生物膜內部氧微剖面（揭示氧消耗機制）

 

測量指標：使用Unisense微電極測量的生物膜內部DO垂直分布。

研究意義：圖6是關鍵發現，顯示DO在生物膜表層（0.1-0.2 mm）急劇下降至零，尤其在底物存在和電路閉合時。這證實生物膜通過微生物呼吸消耗氧，形成動態屏障，其效果受底物和電路狀態調控。

 

數據來源：圖6（caption: "Dissolved oxygen profile in the cathodic biofilm under different conditions"）。

 

循環伏安法（CV）數據（證明催化效應）

 

測量指標：有/無生物膜時的CV曲線，峰值電流和電極電位。

研究意義：圖7顯示生物膜使峰值電流增加46%，陰極工作電位從-280 mV升至-225 mV。這提供了生物膜催化陰極反應（如氧還原）的直接電化學證據，表明其降低過電位，提升電子轉移效率。

 

數據來源：圖7（caption: "(A) Cyclic voltammetries on AC-MFC with biofilm(dashed) and without biofilm(solid). (B) Electrode potentials for different cathode conditions."）。

 

微生物群落組成（闡明生物膜功能基礎）

 

測量指標：16S rRNA測序得到的生物膜菌群在門和屬水平的分布。

研究意義：圖8顯示好氧菌（如Fluviicola, Azoarcus）和厭氧菌（如Desulfovibrio）共存，支持分層結構假說：好氧菌在表層耗氧，厭氧菌在深層參與電催化。這從微生物角度解釋了生物膜的雙重功能。

 

數據來源：圖8（caption: "Phylum and genus distribution obtained by pyrosequencing of the AC-MFC cathodic biofilm."）。

 

研究結論

 

陰極生物膜具有雙重益處：它不僅作為氧擴散屏障維持陽極厭氧環境，還通過催化陰極反應降低過電位，整體提高CE和功率輸出。

氧管理是關鍵機制：生物膜消耗侵入的氧氣，防止其與ARB競爭底物，使更多底物用于產電。

微生物群落協同作用：好氧和厭氧菌的分層分布使生物膜適應氧梯度，好氧菌耗氧，厭氧菌（如Desulfovibrio）可能參與硫循環催化氧還原。

 

工程啟示：在MFC設計中，應允許陰極生物膜自然生長而非移除，并優化陰極面積（如~7.1 cm2）以平衡氧供應與控制。

 

丹麥Unisense電極測量數據的詳細解讀

在本研究中，丹麥Unisense溶解氧微電極的測量數據是揭示陰極生物膜氧屏障機制的基石，其研究意義至關重要：

 

提供高分辨率原位氧分布證據：Unisense微電極能以亞毫米級空間精度測量生物膜內部的DO垂直剖面。圖6的數據顯示，DO在生物膜表層（0.1-0.2 mm內）從飽和值驟降至零，首次直觀呈現了生物膜作為“氧濾網”的微觀過程。這種高分辨率測量避免了傳統采樣對生物膜的破壞，真實反映了氧消耗的動態梯度。

直接驗證生物膜的氧屏障功能：通過對比不同條件（有/無底物、電路開/閉）下的DO剖面，Unisense數據將生物膜的存在與氧消耗直接關聯。例如，底物存在且電路閉合時，DO完全耗盡（圖6中的“×”點），證明生物膜微生物利用底物進行呼吸，主動消耗氧，而非僅靠物理擴散阻擋。這顛覆了生物膜僅是被性屏障的觀點，揭示了其活性氧管理能力。

闡明環境條件對屏障效應的影響：DO剖面顯示，底物可用性和電路狀態顯著改變氧滲透深度。這關聯了電化學性能（如CE）與微生物活動，表明生物膜功能受系統運行參數調控，為優化MFC操作（如底物投加策略）提供了依據。

支持微生物群落分層假說：DO微剖面與微生物測序數據（圖8）結合，為“好氧菌-厭氧菌分層”模型提供了化學環境證據：表層好氧菌耗氧創造厭氧深層，厭氧電活性菌（如Desulfovibrio）得以存活并催化反應。沒有Unisense的DO梯度數據，這一機理將缺乏直接支持。

 

技術優勢保障數據可靠性：Unisense微電極的高靈敏度（檢測限低）、快速響應和微創特性，使其能在MFC原位實時測量，避免了DO因暴露于空氣而失真的問題。這些高質量數據是得出“生物膜有益”結論的關鍵實驗支撐。

 

綜上所述，丹麥Unisense微電極在本研究中扮演了“機制顯微鏡”的角色。其提供的高精度氧微剖面，不僅是證明氧屏障存在的“鐵證”，更是連接生物膜結構、微生物活性和電化學性能的橋梁。沒有這項技術，對生物膜雙重作用的解釋將停留于推測，無法從微觀尺度揭示其動態氧管理機制。因此，它是深入理解MFC生物電化學過程不可或缺的工具。